2.液体培养基中谷氨酰胺的作用，及使用方法。
几乎所有的细胞对谷氨酰胺有较高的要求，细胞需要谷氨酰胺合成蛋白质，在缺少谷氨酰胺时，细胞生长不良而死亡。所以，各种培养液中都含有较大量的谷氨酰胺。谷氨酰胺在溶液中很不稳定，应置-20◦C冰冻保存，用前加入培养基中。加有谷氨酰胺的液体培养基4◦C冰箱储存两周以上时，应重新加入原来量的谷氨酰胺。

3.培养用液pH对细胞生长的影响
由于，大多数细胞适宜pH为7.2~7.4，偏离此范围对细胞将产生有害的影响。各种细胞对pH的要求也不完全相同，原代培养细胞一般对pH变动耐受差，无限细胞系耐受力强。

但总体来说，细胞耐酸性比耐碱性强一些，偏酸环境中更利于细胞生长。因此，我们在配制培养用液时，可把液体的pH稍微调得偏酸一些。液体在经过0.10um或0.22um滤膜过滤时，溶液的PH还会向上浮动0.2左右。

4.常用培养基及培养用液的渗透压范围
培养基名称渗透压范围（mOSM）
DMEM（高糖）315~350
DMEM（低糖）270~330
RPMI-1640260~290
MEM-EBSS280~310
MEM-NEAA280~310
McCoy5a280~310
MEM-a280~310
M—199275~305
IMDM270~300
DMEM/F-12280~310
F—10270~300
F—12275~300

培养基名称渗透压范围（mOSM）
L—15280~320
D-Hanks280~300
Hanks280~300

PBS275~300

5.细胞传代消化时所用胰酶浓度越高越好吗？
不见得！因为胰蛋白酶溶液的消化能力是和溶液的pH、温度、胰酶浓度及溶液中是否含有Ca++,Mg++离子和血清等因素有关。通常情况下，pH8.0,温度37oC其作用能力最强。另外，钙、镁离子及血清均能大大降低其消化能力。我们每次进行传代消化前，一定要用D-Hanks液或PBS液反复冲洗细胞培养瓶，以便于将含血清的培养基冲洗干净，这样就能大大提高消化液的消化能力。通常使用的消化液浓度为：
（1）０.０５％胰蛋白酶＋０.０２％ＥＤＴＡ；
（2）０.２５％胰蛋白酶＋０.０３％ＥＤＴＡ。
（3）0.25%胰蛋白酶
溶液ｐＨ８.０～９.０；使用Ｄ－Ｈａｎｋ液配制。
多数细胞传代消化可使用０.０５％胰蛋白酶＋０.０２％ＥＤＴＡ这种消化液。

6.培养基在使用过程中应注意的问题：
（1）培养基在使用前需37oC预热或在室温平衡后再使用。
（2）细胞培养过程中，吸取过培养液的吸管不能再用火焰烧灼，防止残留在吸管内的培养基焦化，将有害物质带入培养液中。
（3）尽量缩短各种液体、细胞的暴露时间。
（4）避免液体间、细胞间的交叉污染。
（5）配制完全培养基时，配制的量最好在2周内用完为好。

7.血清的有关问题：
新生牛血清：新出生牛5天内取血制成
小牛血清：小牛出生16周以内采血制成。
胎牛血清：（进口血清）要求剖腹取胎制成。
国内厂家往往不能做到，经常把出生2天以内采血称为胎牛血清。
根据血清的生产工艺及血红蛋白、内毒素含量又分为：
（1）.特级胎牛血清：40纳米过滤，内毒素含量≤10EU，血红蛋白含量≤10mg/dl。
（2）.优等胎牛血清：经过3次100纳米过滤，内毒素含量≤25EU/ml，血红蛋白含量≤25mg/ml。
（3）.标准胎牛血清：3次100纳米过滤，低内毒素，低血红蛋白含量。
（4）.活性碳/葡聚糖处理血清：激素含量大大降低。
（5）.透析型胎牛血清：次黄嘌呤和胸腺核苷含量大大降低。

8.其他细胞培养用液：

除培养基、血清、谷氨酰胺外，其他几种液体也属必须，不可省略。
（1）双抗：200倍，（1ml/支）其终浓度为青霉素100U/ml；链霉素100ug/ml，-24oC保存。
（2）L-谷氨酰胺：100倍，（1ml/支），终浓度2mM，-24oC保存。
（3）丙酮酸钠：配制浓度50mM，4ml/支，终浓度为1mM/ml，-24oC保存。
（4）Hepes液：配制浓度1M（5ml/支），一支Hepes加入到200ml
完全培养基中，终浓度为25mM/ml，常温保存。

9.支原体污染及检测：
（1）支原体污染在细胞培养中最常见、不易被查觉，但支原体污染可显著影响细胞功能干扰实验结果。支原体是介于细菌和病毒之间的目前所知能独立生活的最小微生物，它无细胞壁，形态呈高度多形性，最小直径0.2um，可通过滤器。

目前通过对国内100余株/系细胞的检测，形势不容乐观。污染率达30%~60%。课题组从国外引进细胞株/系也经常出现支原体的污染。支原体在污染细胞后，它通过影响细胞的DNA、RNA的合成及急速消耗培养基中的氨基酸来抑制细胞的生长，并能降低细胞的融合率。因此，在运用各种细胞系进行实验研究时，首先要证明所用细胞有无支原体的污染。

（2）支原体污染后，培养基可不发生浑浊，细胞病变轻微或不明显，因此难以发现。目前，支原体检测的方法有以下几种。
（a）相差显微镜观察；
（b）.低张处理地衣红染色法；
（c）荧光染色法；
（d）酶标法；
（e）PCR法：使用该方法进行检测。
优点：灵敏度高，检测耗时短，样品量小
（只需50ul细胞培养用液上清）。
缺点：引物及制剂费用较高。

2.液体培养基中谷氨酰胺的作用，及使用方法。
几乎所有的细胞对谷氨酰胺有较高的要求，细胞需要谷氨酰胺合成蛋白质，在缺少谷氨酰胺时，细胞生长不良而死亡。所以，各种培养液中都含有较大量的谷氨酰胺。谷氨酰胺在溶液中很不稳定，应置-20◦C冰冻保存，用前加入培养基中。加有谷氨酰胺的液体培养基4◦C冰箱储存两周以上时，应重新加入原来量的谷氨酰胺。

3.培养用液pH对细胞生长的影响
由于，大多数细胞适宜pH为7.2~7.4，偏离此范围对细胞将产生有害的影响。各种细胞对pH的要求也不完全相同，原代培养细胞一般对pH变动耐受差，无限细胞系耐受力强。

但总体来说，细胞耐酸性比耐碱性强一些，偏酸环境中更利于细胞生长。因此，我们在配制培养用液时，可把液体的pH稍微调得偏酸一些。液体在经过0.10um或0.22um滤膜过滤时，溶液的PH还会向上浮动0.2左右。

4.常用培养基及培养用液的渗透压范围
培养基名称渗透压范围（mOSM）
DMEM（高糖）315~350
DMEM（低糖）270~330
RPMI-1640260~290
MEM-EBSS280~310
MEM-NEAA280~310
McCoy5a280~310
MEM-a280~310
M—199275~305
IMDM270~300
DMEM/F-12280~310
F—10270~300
F—12275~300

培养基名称渗透压范围（mOSM）
L—15280~320
D-Hanks280~300
Hanks280~300

PBS275~300

5.细胞传代消化时所用胰酶浓度越高越好吗？
不见得！因为胰蛋白酶溶液的消化能力是和溶液的pH、温度、胰酶浓度及溶液中是否含有Ca++,Mg++离子和血清等因素有关。通常情况下，pH8.0,温度37oC其作用能力最强。另外，钙、镁离子及血清均能大大降低其消化能力。我们每次进行传代消化前，一定要用D-Hanks液或PBS液反复冲洗细胞培养瓶，以便于将含血清的培养基冲洗干净，这样就能大大提高消化液的消化能力。通常使用的消化液浓度为：
（1）０.０５％胰蛋白酶＋０.０２％ＥＤＴＡ；
（2）０.２５％胰蛋白酶＋０.０３％ＥＤＴＡ。
（3）0.25%胰蛋白酶
溶液ｐＨ８.０～９.０；使用Ｄ－Ｈａｎｋ液配制。
多数细胞传代消化可使用０.０５％胰蛋白酶＋０.０２％ＥＤＴＡ这种消化液。

6.培养基在使用过程中应注意的问题：
（1）培养基在使用前需37oC预热或在室温平衡后再使用。
（2）细胞培养过程中，吸取过培养液的吸管不能再用火焰烧灼，防止残留在吸管内的培养基焦化，将有害物质带入培养液中。
（3）尽量缩短各种液体、细胞的暴露时间。
（4）避免液体间、细胞间的交叉污染。
（5）配制完全培养基时，配制的量最好在2周内用完为好。

7.血清的有关问题：
新生牛血清：新出生牛5天内取血制成
小牛血清：小牛出生16周以内采血制成。
胎牛血清：（进口血清）要求剖腹取胎制成。
国内厂家往往不能做到，经常把出生2天以内采血称为胎牛血清。
根据血清的生产工艺及血红蛋白、内毒素含量又分为：
（1）.特级胎牛血清：40纳米过滤，内毒素含量≤10EU，血红蛋白含量≤10mg/dl。
（2）.优等胎牛血清：经过3次100纳米过滤，内毒素含量≤25EU/ml，血红蛋白含量≤25mg/ml。
（3）.标准胎牛血清：3次100纳米过滤，低内毒素，低血红蛋白含量。
（4）.活性碳/葡聚糖处理血清：激素含量大大降低。
（5）.透析型胎牛血清：次黄嘌呤和胸腺核苷含量大大降低。

8.其他细胞培养用液：

除培养基、血清、谷氨酰胺外，其他几种液体也属必须，不可省略。
（1）双抗：200倍，（1ml/支）其终浓度为青霉素100U/ml；链霉素100ug/ml，-24oC保存。
（2）L-谷氨酰胺：100倍，（1ml/支），终浓度2mM，-24oC保存。
（3）丙酮酸钠：配制浓度50mM，4ml/支，终浓度为1mM/ml，-24oC保存。
（4）Hepes液：配制浓度1M（5ml/支），一支Hepes加入到200ml
完全培养基中，终浓度为25mM/ml，常温保存。

9.支原体污染及检测：
（1）支原体污染在细胞培养中最常见、不易被查觉，但支原体污染可显著影响细胞功能干扰实验结果。支原体是介于细菌和病毒之间的目前所知能独立生活的最小微生物，它无细胞壁，形态呈高度多形性，最小直径0.2um，可通过滤器。

目前通过对国内100余株/系细胞的检测，形势不容乐观。污染率达30%~60%。课题组从国外引进细胞株/系也经常出现支原体的污染。支原体在污染细胞后，它通过影响细胞的DNA、RNA的合成及急速消耗培养基中的氨基酸来抑制细胞的生长，并能降低细胞的融合率。因此，在运用各种细胞系进行实验研究时，首先要证明所用细胞有无支原体的污染。

（2）支原体污染后，培养基可不发生浑浊，细胞病变轻微或不明显，因此难以发现。目前，支原体检测的方法有以下几种。
（a）相差显微镜观察；
（b）.低张处理地衣红染色法；
（c）荧光染色法；
（d）酶标法；
（e）PCR法：使用该方法进行检测。
优点：灵敏度高，检测耗时短，样品量小
（只需50ul细胞培养用液上清）。
缺点：引物及制剂费用较高。