| 6. 提取的样品避免反复冻融,否则影响RNA提取得率和质量。 | |
| 7. 使用前若发现Buffer 1 #有沉淀,可置于56℃水浴几分钟,即可溶解。 |
| 8. 第一次使用前应按照试剂瓶标签说明在Buffer 3 #中加入无水乙醇。 |
| 9. 所有离心步骤若无特殊说明均在室温下进行,且所有操作步骤动作要迅速。 |
| 10. 若下游实验对 DNA 非常敏感,建议用不含 RNase 的 DNaseI(货号:DY6060)对 RNA 进行处理。 |
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操作步骤 | |
| 1.样品处理: |
| 1)组织:30-50 mg组织在液氮中充分研磨后加入1 ml Buffer 1 #,或在组织样品中 加入1 ml Buffer 1 #后匀浆处理.样品体积不超过Buffer 1#体积的10%。 |
| 2) 单层培养细胞:吸去培养液,加入适量Buffer 1 #,每10 cm2 加入1 ml Buffer 1 #。 |
| 3) 细胞悬液:离心收集细胞。每5×106细胞加入1 ml Buffer 1 #。 |
| 2.将匀浆样品反复吹打几次,在室温条件下静置5min,使蛋白核酸复合物完全分离。 |
| 3.向以上溶液中加入LVFANG,每使用1mlBuffer 1 #加入0.2ml LVFANG,盖好管盖,剧烈振荡15秒,室温放置2-3min。 |
| 4. 4℃ 12,000 rpm离心10min,此时样品分成三层:红色有机相,中间层和上层无色水相,RNA主要在水相中,把水相(约600μl)转移到一个新的离心管(自备)中。 |
| 5.在得到的水相溶液中加入等体积的70%乙醇(无RNase水配制),颠倒混匀。 |
| 6. 将上步所得溶液全部加入到吸附柱(吸附柱应预先装入收集管中)中,若一次不能加完溶液,可分多次转入。12000rmp离心20s,倒掉收集管中的溶液,将吸附柱重新装入收集管中。 |
| 7.向吸附柱中加入350 μl Buffer 2#,12,000 rpm离心20s,倒掉收集管中的废液, |
| 8. 配制DNase I 混合液:取52 μl Buffer 4 #,向其中加入8 μl 10×Reaction Buffer 和20 μl DNase I(1 U/μl),混匀, 配制成终体积为80 μl的反应液。 |
| 9. 向吸附柱中直接加入80 µl DNase I 混合液,20-30℃孵育15min。 |
| 10.向吸附柱中加入350 μl Buffer2#, 10,000 rpm离心1min,弃废液,将吸附柱重新放回收集管中。 |
| 11.向吸附柱中加入500 μl Buffer 3#(使用前检查是否已加入无水乙醇),12,000 rpm离心20s,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。 |
| 12.重复步骤11 | 13.12,000rpm离心2min,倒掉收集管中废液。将吸附柱置于室温数分钟,彻底晾干。注意:这一步目的是将吸附柱中残余乙醇去除,乙醇残留会影响后续酶促反应(酶切、PCR等)。 | | 14. 将吸附柱置于一个新的无RNase离心管中,向吸附柱的中间部位加入30-50 μl Buffer 4 #,室温放置1min,12,000 rpm离心1min,收集RNA溶液,-70℃保存RNA,防止降解。 注意:1)Buffer 4 #体积不应小于30 μl,体积过小影响回收率。 2)如果要提高RNA的产量,可用30-50 μl新的Buffer 4 #重复步骤14 3)如果要提高RNA浓度,可将所得溶液重新加入到吸附柱中,重复步骤14。 | |