• 游客
收藏 | 举报 2004-03-27 16:05   关注:351   回答:15

关于全长cDNA文库构建试剂盒的问题...

已解决 悬赏分:0 - 解决时间 2024-11-24 07:10
关于全长cDNA文库构建试剂盒的问题

我来回答
  • 游客
举报 2004-03-28 15:06
我用过Clonetech公司的SMART cDNA Library Construction Kit,Cat.No.K1051-1,效果挺好的,就是价格高7000圆人民币左右(2003年9月的价位),而且只能完整做5次(总RNA到第一链cDNA合成),PCR可以做15次,另外要提醒的是它不含噬菌体包装蛋白(Lambda DNA Packaging System),如果你要建噬菌体文库,这是必须的,我当初买的普洛麦格(Promega公司)的k3154,效果还行,就是太少(6 extracts)。
还有,做时不能完全安说明书来做,要根据自己的情况来决定具体的时间,否则永远都做不出来的,祝你好运!
  • 游客
举报 2004-03-30 21:18
谢谢agarose313
以后有问题会继续请教
  • 游客
举报 2004-03-30 02:09
“请教”二字可不敢当,共同探讨,共同进步!
  • 游客
举报 2004-04-07 14:22
请教agarose313 ,我现在也在用这个kit建库,不过合成的cDNA亮度不好,可是smear的长度还是可以的。这是怎么回事?我pcr已经用了24个循环了。
  • 游客
举报 2004-03-31 03:59
如果中间有明显亮带的话,就说明没有Overcycled,可以继续增加循环次数,我用的是30次循环。能否告知你的目的基因预测长度(因为建库的目的就是为了筛库来捕获目的基因)、变性时间和延长时间? 你可以先试着用30cycles,不行就延长变性时间或者先加一个95℃,80sec的预变性,我当初从20cycles到30cycles,没有明显改变,后来大幅延长变性时间,才看到又亮又长的条带。你试一下先好啦。
  • 游客
举报 2004-04-06 13:06
昨晚我忘了说,你把产物量不高的那管pcr从-20℃取出来,追加一个95℃,80sec,6cycles(你的循环),如果循环次数不够是瓶颈环节的话,产物量会大幅提升,不过我没见你的图,不知道你所说的smear够长是多长,据我的一点经验,瓶颈环节应该是变性时间太短。
  • 游客
举报 2004-03-31 17:08
哦。谢谢。我是完全按照说明书做的。因为目前还没有要筛的基因,所以计划是要普遍筛的。我的smear是从100~5kb。你的意思是要追加95℃ 80s然后再进行6个95℃ 5s,68℃ 6min的循环吗?你能告诉我你的邮箱吗?我把图发给你看看吧。我不知道如何在这里贴图。
  • 游客
举报 2004-04-03 08:23
我的邮箱是lixj521@sina.com.cn如果你是完全按照说明书做的,而且smear又是从100~5K,亮度又不好,那和我开始做的征状相同,明显变性时间不够,追加循环是没有用的,建议将那管pcr从-20℃取出来,按下面的program再做一次(虽然它自己很没有信心地说它的Taq酶在95℃的Half-life为20~40min,但实践证明要大于此值)
预测目的gene为1-5kb:
●95℃ for 1min20sec
●25cycles
95℃ for 50sec
68℃ for 6min
●68℃ for 10min
  • 游客
举报 2004-04-02 23:20
谢谢agarose313。我先这样做一下。不过由于前面提的只是用DEPC处理水溶解后存于-70的,所以现在我的RNA有所降解,要重新提取。不知对于rna保存,你有什么高招吗?我上次用的rna只存了2个月就不好了。难道是提取的问题吗?可是我用的tip头ep管都严格处理了呀。
  • 游客
举报 2004-03-31 08:53
一次合成的cDNA第一链有10μl,而一次PCR只用2μl,怎么会用完。就是用完了也没有关系呀,把它们从-20℃ 冰箱中拿出来,就认为它们是新配好的PCR体系,直接放在PCR机里跑好啦,我试过的,结果影响不大。
做RT-PCR最好用新鲜的RNA,超过一周即使没有降解我也不用。

下面是我提RNA的一点体会,对于保存RNA我也没有办法:
1)如果枪头和EP管是刚拆包的,就无需DEPC处理,处理后反而会破坏?硅化涂层?导致取液不准和挂液;镊子、装EP管的饭盒等要先用DEPC处理,然后再一起高温灭菌;
2)戴橡胶手套,常用95%的酒精擦手、离心机、实验时用到的EP管架和实验操作区域。不要对着实验区域说话;离心时不能完全按说明书上写的时间,如果离心完管里还有液体就再离心一会。
3)提到RNA后取一点测比值和浓度,然后立即开始下面的实验。
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