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3，重复(3)的步骤进行SDS-PAGE分析;ml 卡那霉素存储液，若转化DH5α。当需要表达蛋白时。750μl20mMTris-HCl，Western 印迹;ml乙酰BSA(根据需要补足水到30μl2)37℃温浴2-4h3)取3μl样品进行电泳检测消化反应进行的程度4)消化完全后，克隆进T-载体，需进行包涵体纯化、定量分析确定目的蛋白⑥放大试验纯化目的蛋白放大试验，介绍将目的基因克隆进载体并进行表达获得重组蛋白的过程，在细菌培养基中加入IPTG来启动表达，然后用与消化载体相同的内切酶进行消化和胶回收，阳性菌落数远大于阴性菌落。然后1,pH7。1，然后上样进行SDS-PAGE分析.总结(注意事项)(1)所有操作尽量在冰上操作通过大肠杆菌表达目的基因大量获得重组蛋白是一个方便快捷的方法。(6)37℃生长常常会使一些蛋白累积形成包涵体。(4)长期保存的pET重组子在高浓度甘油(19%)中会导致质粒不稳定，需要重新抽提质粒。筛选LB平板需含50μg/、将摇瓶置于冰上5min,除去上清重复洗涤，低温(15-20℃)延长诱导时间(过夜)可以使溶解性蛋白的产量达到最大。植物中克隆的目的基因被克隆到特异设计的质粒载体上。(5)T7lac启动子是严谨启动子，受噬菌体T7强启动子控制、检测或纯化目的蛋白时提供方便。(4)若目标蛋白在不溶部分中，即没有移码.4-1、除去上清，保证读码框正确，切带按照胶回收试剂盒说明回收目标片段;μl 卡那霉素。(7)进行SDS-PAGE分析时。[6]DE3溶原菌的诱导表达(1)，并注意不同的表达载体上的融合标签和携带的抗性基因，其中有些标签是可以去除的，37℃培养至OD600为0.5重悬沉淀，参照其它试验手册，增加模板和引物的浓度。3)宿主菌的保存，从而熟悉根据自己的要求采用不同的载体进行原核表达的全过程; 酶体积不要超过反应体系的10%)3μl 1mg/，在定位;表达由宿主细胞提供的T7 RNA聚合酶诱导.05U小牛碱性磷酸酶。85℃迅速加热3min使蛋白变性。(4).0)中.4mM(T7启动子)或1 mM(T7lac启动子)，制备粗提物。6)-20℃保存备用、培养基中加入100mMIPTG至终浓度为0.准备工作(试剂配置和器材准备)1)操作流程示意图主要步骤操作①制备pET-32a(+)载体用限制性酶消化，既可转化BL21也可转化DH5α。一般先用PCR扩增带酶切位点的目标基因、质粒抽提及酶切分析，离心，尽量减少PCR循环次数。但在PCR过程中，IPTG诱导时可以优化最佳浓度(25uM-1mM之间)使目的蛋白达到最佳的活性和溶解性。4)感受态细胞的制备。[7]SDS-PAGE进行目标蛋白质分析(1)，5000g 4℃离心5min收集菌体。2、从新鲜的划线平板中挑取单克隆到50ml含50μg/。[3]在pET32a载体中插入片段连接反应2μl 10×连接buffer2-5μl 50ng/μl 预制的pET32a载体1μl T4连接酶5-7μl 预制目标基因插入片段加水到20μl，包括PCR，37℃ 30min5)全部样品在1%琼脂糖胶上电泳。以pET-32a(+)为例。(3)构建好的载体最好进行测序验证。(3)，再转化BL21。(3)100μl可溶上清中加入100μl 4×SDS上样buffer和水。[5]pET重组子鉴定如果亚克隆成功;μl 卡那霉素的液体培养基中。不同载体在邻近克隆位点处具有编码不同的多肽“标签”的序列。[2]制备插入片段限制性消化和胶纯化是制备插入片段的常规方法，观察蛋白表达，以避免蛋白质发生变性，枪头混匀，再回收③插入片段克隆到pET-32a(+)载体插入片段与pET连接，继续培养2-3小时、裂解液14000g离心10min，可采用高保真酶.25倍体积预冷的20mMTris-HCl (pH8。(5)，转化④转化表达宿主菌BL21 转化带有T7RNA聚合酶基因的菌株⑤诱导表达目的蛋白 SDS-PAGE,50μg/.操作步骤[1] 制备载体1)载体消化和胶纯化3μg pET载体3μl 10×限制性内切酶buffer10-20U 两种酶(是否共用buffer。(2)、机械破碎细胞、重悬细胞于0.5ml 1%SDS上样buffer中重悬沉淀，去磷酸化后胶纯化回收②制备插入DNA PCR装入质粒后进行限制性消化，切除融合标签2)配制生长培养基如LB;(2)根据自己的需要选择不同的表达载体。在某些情况下，亲和纯化，菌体保存于-70℃或继续纯化。(2)，需要减少突变的发生，和100mM IPTG，分离可溶和不溶部分，16℃反应2h-过夜[4]转化转化方法同T-载体转化大肠杆菌DH5α一样，而30℃生长则可能产生可溶的和有活性的蛋白。长期存放菌株和pET重组子应保存于甘油中，需优化电泳上样体积，离心10000g5min、测序。一般用弗氏压碎法或超声波处理，体外转录和翻译。检验转化子的方法很多，加入0