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med_cam 2013-03-15 01:17#2
2倍的稀释度很容易产生误差(枪头微小的残留可能就影响样品之间的稀释比例)。
再加上你本身样品CT值就很大,通常来说CT值大于32可信度就已经降低了(因为样品稀释度很高时就不服从正态分布,而是服从贝努里分布)。
所以你的标准曲线数据重现性会很差,计算出来的效率也会忽高忽低。
建议先用PCR扩增目的基因,然后再用PCR后产物(最好是10倍等比稀释7个梯度,每个梯度做三个重复)来做标准曲线。 -
刮胡刀进行曲 2013-02-28 00:31#3
无所谓吧。pcr效率本来就很少95%的。多数都是90%就不错了。只要每次实验都做标准曲线就可以了。
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zengyb1987 2013-03-01 10:41#4
楼主是用那个公司的染料?最近我也在做实时荧光PCR,发现扩增效率也降低了,本来90%以上的,现在只有60%左右了,不知是不是染料原因?
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shiliyu 2013-03-01 12:07#5
我的是Thermo下的FINNZYMES
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刮胡刀进行曲 2013-03-01 22:29#6可以说是染料原因,也可以说不是染料原因。
zengyb1987
楼主是用那个公司的染料?最近我也在做实时荧光PCR,发现扩增效率也降低了,本来90%以上的,现在只有60%左右了,不知是不是染料原因?
因为SYBR这个染料是靠嵌入DNA发光来检测DNA量的。所以必然会影响DNA复制的效率。另外SYBR是溶解在DMSO中的。如果量太大DMSO也会抑制PCR反应。
因此很多正常的引物用在SYBR里面都会效率下降,有时候需要重新设计引物。
但是只要质量合格,跟哪个公司关系不大。 -
zhangruiquan 2013-03-07 11:05#7
好像理论上95%-105%是算比较有效的扩增。
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exotoxin 2013-03-14 11:20#8
我用的Evagreen,在ABI7500里扩增,用自带软件分析每次扩增效率都大于100%,一般都超过105%了。
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med_cam 2013-03-15 01:17#9
2倍的稀释度很容易产生误差(枪头微小的残留可能就影响样品之间的稀释比例)。
再加上你本身样品CT值就很大,通常来说CT值大于32可信度就已经降低了(因为样品稀释度很高时就不服从正态分布,而是服从贝努里分布)。
所以你的标准曲线数据重现性会很差,计算出来的效率也会忽高忽低。
建议先用PCR扩增目的基因,然后再用PCR后产物(最好是10倍等比稀释7个梯度,每个梯度做三个重复)来做标准曲线。 -
shiliyu 2013-03-15 13:06#10谢谢,很好的建议!以后尝试下。就是有个问题,以前我相同方法,试剂什么也一样的情况下,这个基因CT值有30的,现在补做扩增效率,怎么也达不到30了,只有33左右。这是什么原因,模板降解了吗?我都是放在-20度的,就这次用的时候解冻了下。
med_cam
2倍的稀释度很容易产生误差(枪头微小的残留可能就影响样品之间的稀释比例)。
再加上你本身样品CT值就很大,通常来说CT值大于32可信度就已经降低了(因为样品稀释度很高时就不服从正态分布,而是服从贝努里分布)。
所以你的标准曲线数据重现性会很差,计算出来的效率也会忽高忽低。
建议先用PCR扩增目的基因,然后再用PCR后产物(最好是10倍等比稀释7个梯度,每个梯度做三个重复)来做标准曲线。
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1) 假设地上有1000个绿豆。现在你闭上眼睛从中间切下去,那么大致能对半分,也就是500:500(1:1)的关系。
2) 然后将其中的500再闭上眼睛从中间切下去,那么还是能大致对半分。
3) 如此反复进行。。。。
4) 当最后剩3个绿豆,现在再闭上眼睛从中间切下去,就有很大概率是一边3个,另一边0个(即 全 或 无的关系)。
因此,如果绿豆数量多的时候,闭上眼睛从中间切下去,大致能对半分,这就是服从线性分布。
如最后绿豆数量减少到一定的时候,闭上眼睛从中间切下去,绝大部分情况是全或无的关系, 这时就服从贝努里分布。
回归qPCR:
“绿豆” = “DNA”
“闭上眼睛从中间切下去” = “二倍稀释” (强调“闭上眼睛”是因为我们稀释时也看不见DNA,保证随机性)。
当DNA稀释服从线性分布时,这时的qPCR就是传统意义上的qPCR. 这时候的标准曲线才时一条直线。
当DNA稀释服从贝努里分布时,这时的qPCR叫做"digital PCR(数字PCR)". 为什么起这个名字呢? 因为计算机存储是 0与1, 也就是 全 或 无。 以前大学生理学上提到过细胞动作电位的“全或无”现像也是这个道理,是数字信号,区号于模拟信号。